（一）準備和安裝過濾器
清洗好過濾器，干燥，放入一張孔徑0.22μm的微孔濾膜，用布包裝好，15磅20 min進行高壓滅菌處理。 在超凈臺內(nèi)打開過濾器架好，膠管一端接入濾泵再插入待除菌的液體中，出口端膠管深入到已消毒好的瓶子中。用泵過濾，過濾后要檢查濾膜是否完好無損。
（二）合成培養(yǎng)基的配制
1、根據(jù)細胞目錄中的說明，按下表選擇合適品牌及貨號的培養(yǎng)基干粉，用適量超純水充分溶解。
2、 按要求添加碳酸氫鈉、谷氨酸鈉、HEPES等，充分攪拌使之溶解。
3、 調(diào) pH至7.2左右。
4、 加水至zui終體積。
5、 在超凈臺中對溶液進行濾過除菌，分裝入250 mL或500 mL玻璃瓶中，用翻帽塞塞緊瓶口。
6、 瓶口封好，4℃冰箱貯存。
（三）小牛血清的處理
市場上出售的小牛血清一般做了滅菌處理，但在使用前還應做熱滅活處理，即通過加熱的方法破壞補體（近來也有觀點認為熱滅活處理是不必要的）。胎牛血清不必滅活。
1、 將血清加熱至56℃并保持30 min，其間要不時輕輕晃動，使受熱均勻，防止沉淀析出。
2、 處理后的血清貯存于4℃。
3、 小牛血清在使用前進行篩選以掌握血清的質量。
（四）生長培養(yǎng)基的配制
除無血清培養(yǎng)之外，各種合成培養(yǎng)基在使用前需加入一定量的小牛血清或胎牛血清和抗菌素。
培養(yǎng)基分裝成小瓶（100～200 mL）以便使用，翻帽塞塞緊瓶口。
按如下比例配制： 基本培養(yǎng)基占80％~90％，小牛血清或胎牛血清占10％~20％。 按1％體積分數(shù)加入雙抗貯存液（青霉素+鏈霉素），使青霉素和鏈霉素的終濃度分別為100 U／mL和100 μ／mL，。
（五）凍存細胞的復蘇
應遵守慢凍快融的原則。先將水浴鍋調(diào)至37-37。5度，取出凍存的細胞迅速放入后將細胞面浸至水面以下不斷搖動至融化。
在無菌臺內(nèi)將*培養(yǎng)基加入50ml的小培養(yǎng)瓶內(nèi)，約5ml左右，然后用無菌吸管從凍存管內(nèi)取出細胞，置培養(yǎng)并內(nèi)輕輕搖晃，使細胞均勻后置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。
（六）傳代:
貼壁細胞:
對于貼壁細胞應先吸（倒）盡培養(yǎng)基，吸的越干凈越好，以免中和后加入的消化液，使強度減弱（或PBS洗1－3次）。50ml培養(yǎng)瓶加入消化液約1-3ml，按此比例進行消化，（根據(jù)經(jīng)驗），晃動使消化液鋪均勻置37度培養(yǎng)箱約2-5分鐘，鏡下見細胞收縮變圓或少數(shù)脫落后，輕輕振動瓶底使細胞全部脫落，加入2-3ml*培養(yǎng)基后，輕輕吹打，使細胞基本成單個懸浮，然后分置其它無菌培養(yǎng)瓶內(nèi)，加入*培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)或實驗。
懸浮細胞:
一般傳代可直接將細胞原液分置其它培養(yǎng)瓶內(nèi)，加入*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)，如要高濃度可先離心1000rpm，5min后加入*培養(yǎng)基，輕輕吹勻后，分置其它培養(yǎng)瓶內(nèi)加入*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
（七）凍存
將貼壁細胞消化后離心收集，懸浮細胞直接離心收集，以*培養(yǎng)基或胎牛血清重懸細胞至終濃度約106/ml。加入10%的DMSO。以每管1～2ml分裝至凍存管中。用絕熱材料包裹置-70攝氏度冰箱冷凍。次日保存到液氮中。
（八）注意事項
玻璃吸管和玻璃培養(yǎng)瓶的消毒:1）高壓蒸汽滅菌15分鐘以上;2）干烤消毒140度2小時以上;
無菌工作臺先清洗后用75%酒精擦拭干凈，紫外線照射40分鐘以上;各種培養(yǎng)板照射3小時以上;
培養(yǎng)基（pH7.2）和血清配制好后要做無菌試驗:將血清按10%加入培養(yǎng)基內(nèi)，用無菌的玻璃離心管或玻璃瓶取*培養(yǎng)基5-10ml置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)2-3天，肉眼見無渾濁或沉淀等異物。分裝后置4度保存;
消化液（pH7.8）或其它加入液，應用高壓蒸汽滅菌或一次性無菌濾器過濾除菌，分裝成支置-20度保存;
培養(yǎng)箱應先用清水清洗后用75%酒精擦拭一遍（如有紫外線的應照射1小時以上，如有高溫滅菌的應按程序來菌）。至少每月一次。
進入操作時應注意先清洗雙手及手腕，然后用75%酒精擦拭，操作時注意無菌臺內(nèi)空間層次。手及物品不要在暴露的瓶口上方來往，如果數(shù)量較多，培養(yǎng)瓶應放在與酒精燈平行地方便于操作，瓶與瓶之間應相隔一定的距離，開瓶（蓋）時應先用75%酒精反復擦拭或用燈燒，打開后應用燈先燒口，然后燒蓋。用完后同樣操作。整個操作過程盡量在無菌臺靠里面一點。
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